Blickpunkt


<p>Die Messung von Iod mit der optischen Emissionsspektrometrie mit induktiv gekoppeltem Plasma (ICP-OES) ist eigentlich unkompliziert. Der Analytiker steht jedoch vor dem Problem, dass Iod sehr leicht seinen Oxidationszustand wechselt und elementar häufig gasförmig auftritt.</p>
<p>So ist es bereits schwierig, stabile Standardlösungen herzustellen; vollends kompliziert wird es, wenn die Messung Matrixanpassungen der Standards verlangt (siehe Kasten). Hier besteht stets die Gefahr, dass Matrixbestandteile mit den Iodspezies zu elementarem Iod reagieren und daher Fehlmessungen auftreten. Diese sind durch stark streuende Messwerte gekennzeichnet sowie durch Iodwerte, die deutlich über dem Erwartungswert liegen. Ursache dafür ist vermutlich, dass elementares Iod in der Probenlösung beim Zerstäuben frei wird und als Gas überproportional stark ins Plasma gelangt.</p>
<p>Zudem kann sich elementares Iod leicht an Kunststoffteilen festsetzen und so für längere Zeit die Messausrüstung verunreinigen.</p>


<h2>Die Aufgabe</h2>
<p>Iod war in einer Arsen-Selen-Legierung zu bestimmen. Bereits beim Probenaufschluss mit konzentrierter Salpetersäure in der Wärme verflüchtigte sich mit den entstehenden nitrosen Gasen auch Iod. Unter milderen Aufschlussbedingungen verblieb elementares Iod jedoch in der Probenlösung, erkennbar an der bräunlichen Verfärbung. Zudem war es unmöglich, stabile matrixangepasste Standards herzustellen: Die hierzu notwendige arsenige und selenige Säure sowie überschüssige Salpetersäure aus dem Aufschluss überführten Iod in seine elementare Form.</p>
<p>Ein Schlüssel zur Lösung des Problems fand sich in der Veröffentlichung von Ortrud Buresch et al.:<sup>1</sup> Die Autoren schlagen ein zweistufiges Verfahren mit Aufschluss und anschließender Abdestillation des Iods aus der Probe vor. Iod wird in Hydrazinhydrochloridlösung aufgefangen und zu Iodid reduziert. Zwar ließen sich die von Ortrud Buresch verwendeten Aufschlussmethoden nicht auf diese Aufgabe übertragen — Hydrazin als Reagenz zur Absorption und Stabilisierung des Iods als Iodid erwies sich jedoch als vielversprechend.</p>


<h2>Probenvorbereitung</h2>
<p>Vorversuche mit Testproben zeigten, dass ein Argonstrom während des Lösevorgangs quantitativ das Iod aus der Aufschlusslösung austreibt. Es kann zudem vollständig in einer mit Hydrazindichloridlösung beschickten Vorlage aufgefangen werden. Dafür ist jedoch konsequent mit Glasbauteilen zu arbeiten: An Verbindungen aus Silikonschlauchmaterial entstehen stets violette Ablagerungen von Iod. Dort kommt es folglich zu Analytverlusten.</p>
<p>Die modifizierte Probenvorbereitung sah wie folgt aus (Abbildung 1): 0,5 g Probe mit einem erwarteten Iodgehalt von 2000 bis 3000 ppm wurden in einem Aufschlussgefäß mit 10 mL konzentrierter Salpetersäure versetzt und im Wasserbad auf 80 °C erwärmt. Beim Lösevorgang entstehen nitrose Gase und elementares Iod; ein Argonstrom trieb diese Substanzen 30 Minuten lang aus dem Aufschlussgefäß. Eine Reihe von drei Waschflaschen, mit je 30 mL 2%-iger Hydrazindichloridlösung gefüllt, fingen die Substanzen auf. Die vereinigten Lösungen aus den Waschflaschen — der Großteil des Iods bleibt in der ersten Flasche zurück — wurden auf 250 mL aufgefüllt. Diese Lösung ließ sich direkt messen.</p>
<p>Ein großer Vorteil dieses Verfahrens: Der Analyt wird vollständig von der Probenmatrix abgetrennt. So lässt sich unabhängig von den Eigenschaften der ursprünglichen Probe die Matrix der Standards exakt anpassen.</p>


<h2>ICP-OES-Messung</h2>
<p>Die Messungen erfolgten mit einem iCAP 6000 duo von Thermo Fisher Scientific bei axialer Betrachtung des Plasmas. Das Gerät maß bei den Wellenlängen 178,2 sowie 179,9 und 183,0 nm. Um die Linearität zu prüfen und die Nachweisgrenze des Verfahrens zu bestimmen, wurde eine Kalibrierungsfunktion mit sechs Standards von 0 bis 10 mg·L—1 aufgenommen. Für alle Linien lagen die Korrelationskoeffizienten bei &gt; 0,9999, die Nachweisgrenze zwischen 0,06 und 0,09 mg·L—1.</p>
<p>Die Proben wurden gegen vier Standards gemessen (0, 5, 10 und 15 mg·L—1 Iod als Iodid). Diese waren mit 2%-iger Hydrazindichloridlösung angesetzt. Die Standards waren stabil, sowohl bei der Messung als auch bei längerer Aufbewahrung. Die Hydrazindichloridlösung vertrug sich gut mit der 10 Vol%-igen Salpetersäure als Spüllösung.</p>
<p>Wiederfindungsversuche mit künstlich hergestellten Proben, in denen Iod sowohl elementar als auch in Form von Iodid oder Iodat vorlag, ergaben Wiederfindungsraten von 101 bis 104 %.</p>
<p> Zudem wurde getestet, ob sich Iod eventuell im Messsystem anreichert — bei anderen Messungen war das häufig ein Problem. Hierfür wurde eine relativ hochkonzentrierte Probe (etwa 41 mg·L—1) über einen Zeitraum von 15 Minuten elfmal gemessen. Es gab keinen Trend, der auf eine Akkumulation von Iod im Messsystem schließen ließ (Abbildung 2).</p>


<h2>Das Ergebnis</h2>
<p>Es ist nicht zwingend erforderlich, zweistufig vorzugehen, wie beim Vorschlag von Ortrud Buresch et al.: Aufschluss und Austreiben des Iods mit einem Inertgas können parallel erfolgen. Die beim Aufschluss mit Salpetersäure entstehenden nitrosen Gase beeinträchtigen diesen Vorgang nicht. Durch die Reaktion mit Hydrazin bildet sich Iodid; es ist in der Lösung über längere Zeit und auch während der Messung stabil. Iod reicherte sich nicht im Messsystem an.</p>
<p>Im vorliegenden Fall betrug die Iodkonzentration in der Probe 2000 bis 3000 ppm, in der Messlösung etwa 6 bis 10 mg·L—1. Die Nachweisgrenze beträgt &lt; 0,1 mg·L—1, auch größere Probenmengen lassen sich einsetzen. Daher sollte sich das Verfahren auch auf Proben mit geringeren Iodgehalten anpassen lassen.</p>
<p><b>Grit Monse</b>, Jahrgang 1968, hat an der TU Dresden Chemie studiert. Seit 2001 leitet sie das Labor bei Retorte Selenium Chemicals and Metals. Sie beschäftigt sich neben der Qualitätssicherung mit Forschungs- und Entwicklungsaufgaben rund um das Element Selen und seine Anwendungen. <i><a href="mailto:grit.monse@retorte.de">grit.monse@retorte.de</a></i></p>


<h2>— — — Matrixanpassung</h2>
<p>Ob die Matrix den Analyt in den Standards und in der Probe gleichermaßen beeinflusst, bestimmt maßgeblich die Richtigkeit von Messergebnissen in der ICP-OES. Wichtig sind dabei spektrale Interferenzen als auch Plasmaeffekte und Viskositätseigenschaften der Analytlösung.</p>
<p>Um möglichst richtige Resultate zu erhalten, versucht man stets, Standardlösungen und Proben hinsichtlich ihrer Matrix möglichst ähnlich zu gestalten.</p>



<ul>
<li>
<sup>1 </sup>

 
O. Buresch,
W. Höhnle,
H.G. v. Schnering: 
<source>Fresenius J. Anal. Chem.,, 
(1986), 
325, 
607–<lpage>610.</lpage>
</li>
</ul>


Artikel

Iodanalytik: Wie man einen Flüchtigen einfängt

Die Messung von Iod mit der optischen Emissionsspektrometrie mit induktiv gekoppeltem Plasma (ICP-OES) ist eigentlich unkompliziert. Der Analytiker steht jedoch vor dem Problem, dass Iod sehr leicht seinen Oxidationszustand wechselt und elementar häufig gasförmig auftritt. So ist es bereits schwi...

Dr.habil.


<p>Kontaminiertes Grundwasser, besonders an ehemaligen Industriestandorten, zu sanieren, ist bis heute eine Herausforderung. Ein viel versprechender Ansatz sind Pflanzenkläranlagen (Constructed Wetlands). Sie bilden das natürliche Abbaupotential von Auenlandschaften nach. Ihr Reinigungspotential basiert auf einem komplexen Zusammenspiel von Boden, Porenwasser, Pflanze und Atmosphäre.</p>
<p>Das kontaminierte Grundwasser durchströmt dabei die Pflanzenkläranlage je nach Bautyp horizontal oder vertikal. Mikrobielle, pflanzenphysiologische und physikalisch-chemische Vorgänge sanieren das Grundwasser naturnah und relativ kostengünstig. Einmal angelegte Pflanzenkläranlagen funktionieren in der Regel ohne weitere Eingriffe von außen. Unter anderem bauen Mikroorganismen im Wurzelbereich der Pflanzen die Schadstoffe ab. Pflanzenkläranlagen emittieren auch Schadstoffe.</p>
<p>Um den Verbleib der Schadstoffe vollständig zu charakterisieren, fehlten bislang Untersuchungen zu möglichen Prozessen wie Aufnahme, Verteilung und Abbau der Schadstoffe in den Pflanzen selbst. Hierfür sind analytische Messverfahren nötig, die sowohl qualitative als auch quantitative Aussagen darüber machen, wie Pflanzen das Sanierungspotential von Pflanzenkläranlagen beeinflussen.</p>


<h2>Eine Pilotanlage in Leuna</h2>
<p>Seit Oktober 2007 existiert im Rahmen eines Forschungsprojekts des Helmholtz-Zentrums für Umweltforschung (UFZ) eine Pilotanlage im Grundwasserabstrom eines ehemaligen Raffineriegeländes in Leuna (Sachsen-Anhalt). Die Pilotanlage testet auch Pflanzenkläranlagen für die Reinigung des kontaminierten Grundwassers.</p>
<p>Das Grundwasser dort ist mit erheblichen Mengen an leichtflüchtigen organischen Verbindungen (volatile organic compounds, VOCs) kontaminiert, insbesondere mit den Substanzen MTBE (Methyl-tert-butylether) und Benzol, die früher als Benzinadditive dienten. Das Grundwasser enthält durchschnittlich 2 bzw. 15 mg·L—1 MTBE und Benzol. Die Pilot-Pflanzenkläranlagen sind je 5 x 1 x 0,6 m groß, mit Feinkies gefüllt und mit Schilf (Phragmites australis) bepflanzt (Abbildung 1). Derartige Sumpfpflanzen haben sich evolutionär an feuchte und teilweise überstaute Standorte angepasst.</p>
<p>Neben dem mikrobiellen Abbau in der Wurzelzone spielt es eine wichtige Rolle, wie die Pflanze die Schadstoffe aufnimmt.<sup>1</sup> Um diese Abbau-, Verteilungs- und Transportprozesse der VOCs in den Pflanzen zu charakterisieren und Massenbilanzen für die Gesamtanlage zu erstellen, ist der Schadstoffgehalt in den Pflanzen quantitativ zu erfassen.</p>
<p>Zur Analytik der VOCs eignet sich die GC/MS, aber sowohl bei Probennahme als auch bei der Probenvorbereitung ist die Messmethode an die Probenmatrix anzupassen. Denn Schilfpflanzen weisen morphologische Besonderheiten (Hohlstengel) auf, welche die Probenvorbereitung schwierig machen: Das Probenmaterial ist heterogen, die Probeneinwaage aufgrund unterschiedlicher Wassergehalte schwierig, die Analyte sind flüchtig und es ist kein einheitliches Probenvolumen realisierbar.</p>
<p>Die Literatur beschreibt keine Verfahren zur Quantifizierung von MTBE und Benzol in Schilfpflanzen. Bekannt ist aber, dass lösungsmittelbasierte Extraktionsverfahren nur bedingt zur Analytik leichflüchtiger Komponenten geeignet sind, da die flüchtigen Verbindungen während der Extraktion entweichen.1) </p>


<h2>Gasraumanalysen</h2>
<p>Um MTBE und Benzol in Schilfpflanzen zu bestimmen, wurden unterschiedliche Headspace(HS)-basierte Probenvorbereitungstechniken untersucht und optimiert. Sie umfassten die statische HS-Analyse des reinen Pflanzenmaterials, die lösungsmittelunterstützte statische HS-Analyse, die HS-Festphasenmikroextraktion (solid phase microextraction, SPME) sowie die dynamische HS-Analyse. Bei der statischen HS-Analyse wird nach Einstellung des Gleichgewichtes einmalig ein definiertes Probevolumen aus dem Gasraum entnommen. Bei der dynamischen HS werden kontinuierlich flüchtige Stoffe mit einem Gasstrom extrahiert und auf einem Adsorbens angereichert.</p>
<p>Die statische HS und die dynamische HS erwiesen sich in Kombination mit GC/MS als geeignet und wurden bezüglich der Extraktionsparameter optimiert. Zwar realisert die HS-SPME exzellente Nachweisgrenzen, aber die Aufnahmekapazität der Polydimethylsiloxan-Carboxen-SPME-Fasern ist begrenzt. Das schränkt den linearen Bereich der Kalibrierfunktionen stark ein.</p>


<h2>Aus der Kläranlage ins Labor</h2>
<p>Die Probennahme beeinflusste die Ergebnisse wesentlich: Vergleicht man verschiedene Herangehensweisen, etwa das Kleinschneiden des Pflanzenmaterials am Ort der Probennahme und sofortige Überführung der Proben in HS-Vials, führte das in Abhängigkeit der Pflanzenteile zu teilweisen Minderbefunden von bis zu 100 %, das heißt, es ließ sich teilweise überhaupt kein Analyt nachweisen.</p>
<p>Folgendes Verfahren erwies sich dagegen als praktikabel und optimal für die Extraktionsausbeuten: Die Pflanzen werden mit einem Spaten aus der Pflanzenkläranlage entnommen, als Ganzes in Alufolie verpackt und sofort eingefroren. Im Labor schneidet man sie im noch gefrorenen Zustand in etwa 5 mm kleine Stücke, überführt sie in 20 mL-HS-Vials und verschließt diese luftdicht.</p>
<p>Für die statische HS-Analyse sind etwa 2 g geschnittenes Pflanzenmaterial einzuwiegen. Nach 30-minütiger Thermostatisierung bei 80 °C unter Schütteln werden 1 mL Probevolumen aus dem Gasraum zur Analyse in den GC injiziert.</p>
<p>Abbildung 2 zeigt exemplarisch die Signalflächen der Schadstoffe MTBE und Benzol, auf die jeweiligen Trockenmassen der Pflanzenproben bezogen. Es zeigte sich eine charakteristische Verteilung der Substanzen: Die Wurzeln enthielten die größten Schadstoffanteile. Mit zunehmender Stengelhöhe nahm die Intensität ab, allerdings in unterschiedlichen Verhältnissen für beide Substanzen. Die Schadstoffmenge in den Blättern war gering.</p>
<p>Es ist aufgrund der morphologischen Besonderheiten der Schilfpflanzen nicht möglich, die Schadstoffgehalte mit der statischen HS-Analyse exakt zu quantifizieren, da sich das Volumen nicht genau angeben lässt. Aufgrund der Flüchtigkeit der VOCs lassen sich Proben, die einen variierenden Wassergehalt aufweisen, zudem nicht vor der Analyse trocknen. Ein mit den Leitsubstanzen versetztes Pflanzenreferenzmaterial steht ebenfalls nicht zur Verfügung.</p>
<p>Anders sieht es bei der dynamischen HS-Extraktion mit kontinuierlicher Sammlung der Schadstoffe auf einem Adsorbens aus (Abbildung 3), da hier die Pflanzenmorphologie die Quantifizierung nicht beeinflusst. Die Kalibrierung der Sorptionsröhrchen erfolgt unabhängig von der Probenmatrix. Mit einer Feuchtefalle lässt sich zudem der Einfluss des Wassergehalts der Proben auf die Anreicherung minimieren. So lassen sich die Gesamtschadstoffmengen in den Pflanzen quantitativ bestimmen.</p>


<h2>Auf die Substanz kommt es an</h2>
<p>Abbildung 4 zeigt exemplarisch die Konzentrationen von MTBE und Benzol in einer Pflanze in Abhängigkeit von der Pflanzenhöhe. Auch hier waren die Schadstoffe charakteristisch verteilt. Beide Substanzen werden ähnlich gut aus dem Grundwasser über die Wurzeln aufgenommen, daher waren im unteren Pflanzenbereich die Schadstoffbelastungen am höchsten — abhängig von der Konzentration im Porenwasser.</p>
<p>MTBE wird dann ausschließlich über den Transpirationsstrom in oberirdische Pflanzenteile transportiert und verflüchtigt sich anschließend über den Stengel und vor allem über die Blätter. Die MTBE-Gehalte nahmen mit zunehmender Höhe der Pflanze nur geringfügig ab. Das bestätigte das in der Literatur diskutierte Transportmodell.<sup>2</sup></p>
<p>Bei Benzol hingegen nimmt die Konzentration mit zunehmender Pflanzenhöhe deutlich stärker ab. Der Grund: Im Gegensatz zum MTBE metabolisiert die Pflanze Benzol über Enzyme.<sup>3</sup> Die Unterschiede im Transportverhalten beider Substanzen sind eine mögliche Ursache dafür, dass der Anteil der Volatilisierung am Gesamtschadstoffverlust für MTBE im Vergleich zu Benzol höher ist, obwohl beide Schadstoffe vergleichbare Flüchtigkeiten zeigen.<sup>4</sup></p>
<p>Um die Gesamtschadstoffbelastung pro Pflanze zu bestimmen, ist neben den oberirdischen Pflanzenteilen, also Stengeln und Blättern, auch die Wurzel zu untersuchen. Schilfpflanzen bilden aber standortspezifisch ein weitläufiges Wurzelsystem aus Rhizomen (Wurzelstock) und Feinwurzeln aus, wodurch die Zuordnung eines definierten Wurzelbereiches zu einer Pflanze kaum möglich ist.</p>
<p>Für erste Abschätzungen wurden die Wurzeln, die während der Probennahme mitentfernt wurden, als Mischproben analysiert. In Summe aus allen Pflanzenkompartimenten ergaben sich im Durchschnitt Schadstoffgehalte von 13 µg MTBE und 30 µg Benzol pro Pflanze. Die Pflanzenkläranlage enthielt im Untersuchungszeitraum ungefähr 1700 Pflanzen; die Gesamtschadstoffmenge in allen Pflanzen belief sich also grob geschätzt auf 22 mg MTBE und 51 mg Benzol.</p>
<p>Die Sanierungsleistung der Anlage ist die Differenz der Konzentrationen im Zu- und im Ablaufwasser. Sie betrug hier mit einem Grundwasserdurchsatz von 6 L·h—1 etwa 158 mg·d—1 MTBE und etwa 1900 mg·d—1 Benzol. Diese erstmals experimentell bestimmten Werte dienen in weiteren Arbeiten als Grundlage, um den Anteil der Phytoextraktion am Gesamtschadstoffverlust der Pflanzenkläranlage zu bestimmen.</p>
<p>Das entwickelte Verfahren auf Basis von dynamischer HS und Thermodesorptions-GC-MS in Kombination mit einer optimierten Probennahme bestimmt VOCs in Sumpfpflanzen quantitativ. Zukünftig wird diese analytische Prozedur zur routinemäßigen Untersuchung der Pflanzen im Jahresverlauf angewendet, um Korrelationen zwischen der Konzentration der VOCs in Pflanzen und der Wasserkonzentration sowie den Emissionsraten zu ermitteln. So lässt sich auch klären, welchen Einfluss die Vitalität der Pflanzen auf das Sanierungspotential der Pflanzenkläranlage hat.</p>
<p><b>Falk Mothes</b> (<a href="https://M.Sc" target="_blank">M.Sc</a>.) arbeitet als wissenschaftlicher Mitarbeiter in der Arbeitsgruppe Vor-Ort-Analytik am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung. Er beschäftigt sich mit analytischen Verfahren zur Bestimmung organischer Verbindungen in Pflanzenmatrizes. <b>Nils Reiche</b> (Dipl. Chem.) promovierte an der Martin-Luther-Universität in Halle in analytischer Chemie. Als Post-Doc erarbeitet er am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung Methoden, um Emissionen aus Pflanzenkläranlagen zu erfassen. <b>Petra Fiedler</b> arbeitet als technische Mitarbeiterin in der Arbeitsgruppe Vor-Ort-Analytik am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung. Sie ist für die GC/MS-Analytik verantwortlich. <b>Monika Möder</b> beschäftigt sich als promovierte Chemikerin am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung mit der Entwicklung analytischer Methoden zur Spurenbestimmung organischer Schadstoffe. <b>Helko Borsdorf</b> studierte in Leipzig Chemie, promovierte dort in analytischer Chemie und habilitierte sich in physikalischer Chemie an der Christian-Albrechts-Universität Kiel. Er leitet die Arbeitsgruppe Vor-Ort-Analytik am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung.</p>


<h2>— — — QUERGELESEN</h2>
<p>Eine Pilotanlage in Sachsen-Anhalt zeigt, wie Kläranlagen mit Schilfpflanzen kontaminiertes Grundwasser reinigen.</p>
<p>Statische und dynamische Headspace-Analysen in Kombination mit GC/MS bestimmen leichtflüchtige organische Verbindungen in Schilfpflanzen.</p>
<p>Die Analytik charakterisiert den Einfluss der Pflanzen auf das Reinigungspotenzial der Kläranlage.</p>


<h2>— — — Kurz notiert</h2>


<h2>Neue Halbwertszeit für 79Se</h2>
<p>Die Halbwertszeit von 79Se beträgt etwa 327 000 Jahre; mit einer Abweichung von nur 8000 Jahren ist die Messunsicherheit geringer als bisher. Die Wissenschaftler isolierten das Selenisotop aus einer Spaltproduktlösung aus abgebranntem Kernbrennstoff und trennten es unter anderem über den Reinsch-Test von anderen radioaktiven Stoffen. Mit Flüssigszintillationszählung ermittelten sie dann die Halbwertszeit. Die Physikalisch-Technische Bundesanstalt leitete die Messungen.</p>


<h2>Silicium auf Defekte prüfen</h2>
<p>Ein neues Laserverfahren untersucht die Qualität von Siliciumsolarzellen. Mit Photoluminiszenzstrahlung macht das System Fehler im Schichtaufbau der Solarzellen sichtbar. Robert Bardos vom australischen Unternehmen BT Imaging und Thorsten Trupke von der australischen University of New South Wales erhielten dafür den Berthold-Leibinger-Innovationspreis.</p>
<p><i>Christiane Junk</i></p>


<h2>Schnelltest findet Salmonellen im Essen</h2>
<p>Ob das Softeis mit Salmonellen verseucht ist, zeigt innerhalb von drei Stunden ein neuer Schnelltest der Hochschule Niederrhein in Krefeld. Bisherige Tests, die auch vor Gericht beweiskräftig sind, dauern bis zu drei Tage.</p>
<p>Das Gerät versetzt die Probe mit magnetischen Partikeln, auf denen Antikörper sitzen, welche an Salmonellen binden. Ein Magnetfeld zieht die Partikel und gebundenen Zellen an den Rand des Testgefäßes. Dort wird die Salmonellen-DNA mit einem Farbstoff markiert und über Fluoreszenz nachgewiesen. Das Krefelder Unternehmen Inbio soll den Prototyp zur Marktreife bringen.</p>


<h2>Bakterien detektieren Arsen</h2>
<p>Bei Kontakt mit Arsen im Wasser emittieren genetisch modifizierte E.coli-Bakterien Licht: Das Element bindet im Bakterium an ein Reportergen, woraufhin das Enzym Luciferase exprimiert wird. Diese oxidiert das Aldehyd Decanal mit Sauerstoff zur Carbonsäure, wobei Licht frei wird. Die Biolumineszenz erfasst ein Messgerät und rechnet auf die Arsenkonzentration im Wasser zurück. Eine Testphase läuft in Bangladesch, um vor Ort die Arsenmenge in Brunnenwasser zu bestimmen.</p>
<p>Den Test haben Forscher am Helmholtz-Zentrum für Umweltforschung in Leipzig entwickelt. Sie gewannen damit den Gründerpreis ”Ready for Business“ der Handelshochschule Leipzig.</p>


<h2>Menschliches Proteom komplett kartiert</h2>
<p>20 300: So viele menschliche Proteine hat ein Forscherteam im Massenspektrometer erfasst, bestimmt und in einer Datenbank gesammelt. Nach Vorbild des humanen Genomprojekts wollen die Wissenschaftler an der ETH Zürich und am Institut for Systems Biology im US-amerikanischen Seattle ihre Proteomdaten allen Interessierten zugänglich machen.</p>
<p> <ext-link ext-link-type="uri"><a href="https://www.peptideatlas.org" target="_blank">www.peptideatlas.org</a></ext-link></p>


<h2>Spurensuche im Meer</h2>
<p>Die Max-Planck-Forschungsgruppe Marine Geochemie untersucht mit einem neuen Massenspektrometer im Meer gelöste organische Substanzen und deren Umsetzungsprozesse. Das vier Tonnen schwere Fouriertransformations-Ionenzyklotronresonanz-Massenspektrometer (FT-ICR-MS) haben die Analytiker an der Universität Oldenburg in Betrieb genommen. Nach Angaben des Max-Planck-Instituts ist es eines von bisher nur fünf Geräten weltweit.</p>
<p><i>Brigitte Osterath</i></p>



<ul>
<li>
<sup>1 </sup>

N. Reiche, Dissertation, Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg, 2010.
</li>
<li>
<sup>2 </sup>

 
S. Trapp,
X. Yu,
H. Mosbaek: 
<source>Environ. Sci. Pollut. R., 
(2003), 
10, 
357.
</li>
<li>
<sup>3 </sup>

 
C. Collins,
F. Laturnus,
A. Nepovim: 
<source>Environ. Sci. Pollut. R., 
(2002), 
9, 
86.
</li>
<li>
<sup>4 </sup>

 
N. Reiche,
W. Lorenz,
H. Borsdorf: 
<source>Chemosphere, 
(2010), 
79, 
162.
</li>
</ul>


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